Frottis sanguins pour diagnostic rapide avec la technologie FISH

Les frottis sanguins sont réalisés sur des lames non traitées en déposant 1 ou 2 gouttes de sang sur la lame en fonction de l'épaisseur du sang. Étalez la goutte en posant l'extrémité d'une autre lame et en inclinant cette dernière de façon à ce que la goutte s'étale rapidement vers l'extrémité de la lame d'échantillon dès que le sang commence à prendre une forme rectangulaire le long du bord de la lame qui est maintenue inclinée. Un frottis sanguin idéal ne couvre que la moitié de la lame et le bord inférieur du frottis doit ressembler à une plume. Préparez deux lames par échantillon avec des concentrations différentes de sang. Des lames à partir d'un échantillon de contrôle négatif sont également fabriquées. Marquez les lames avec le nom de l'échantillon, la référence du laboratoire et la date. Laissez sécher les lames en position verticale pendant 10 à 30 minutes.

Lysez les GR en plaçant les lames avec frottis dans une nouvelle solution méthanol:acide acétique 1:1 pendant 2 minutes trois fois. Laissez les lames sécher en position verticale, puis déterminez avec un microscope à contraste de phase les cellules utilisables, la concentration cellulaire et la meilleure zone pour l'hybridation. En contraste de phase, les lymphocytes apparaissent sous forme de cellules rondes et brillantes et conviennent parfaitement pour l'analyse FISH.

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